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微量法 100 管/48 样
测定意义:
辅酶ⅡNADP(H)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,NADP+和NADPH 含量测定可以计算 NADP(NADPH + NADP+ )含量和 NADPH/NADP+比值,其变化与磷酸戊糖途径和生物合成以及抗氧化反应密切相关。NADPH/NADP+比值不仅是细胞氧化还原态的主要标志之一,而且在 PPP 途径、生物合成和抗氧化代谢中具有重要调控作用。
分别用酸性和碱性提取液提取样品中 NADP+和NADPH。NADPH 通过PMS 的递氢作用,使氧化型噻唑蓝(MTT)还原为甲瓒,570nm 下检测吸光值,从而测定NADPH 含量。利用 6-磷酸葡萄糖脱氢酶还原NADP+为NADPH,从而检测NADP+含量。
产品名称 | BF6002-100T/48S | Storage |
提取液:酸性提取液 | 50ml | 4℃ |
提取液:碱性提取液 | 50ml | 4℃ |
试剂一:液体 | 10ml | 4℃ |
试剂二:粉剂 | 1 瓶 | -20℃ |
试剂三:粉剂 | 1 瓶 | -20℃ |
试剂四:粉剂 | 1 瓶 | 4℃ |
试剂五:液体 | 3.6ml | 4℃ |
试剂六:液体 | 30ml | 4℃ |
试剂七:液体 | 50ml | 4℃ |
说明书 | 一份 |
试剂二:粉剂×1 支,-20 ℃保存,用时加入 3ml 蒸馏水,混匀;溶解后 4 ℃保存一周;试剂三:粉剂×1 支,-20℃保存,用时加入 3ml 蒸馏水,混匀;溶解后 4℃保存一周;试剂四:粉剂×1 支,4 ℃保存,用时加入 3ml 蒸馏水,混匀;溶解后 4℃保存一周;
酶标仪、台式离心机、可调式移液器、96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。
NADP+的提取:按照血清(浆)体积(ml):酸性提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议取约 0.1ml
血清(浆),加入 1ml 酸性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
NADPH 的提取:按照血清(浆)体积(ml):碱性提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议取约 0.1ml
血清(浆),加入 1ml 碱性提取液),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
NADP+的提取:按照组织质量(g):酸性提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议取约 0.1g 组织,加
入 1ml 酸性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
NADPH 的提取:按照组织质量(g):碱性提取液体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议取约 0.1g 组织,
加入 1ml 碱性提取液),冰浴研磨,95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
NADP+的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104 个):酸性提取液体
积(ml)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1ml 酸性提取液),超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 碱性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
NADPH 的提取:先收集细胞或细菌到离心管内,弃上清,按照细菌或细胞数量(104 个):碱性提取液体
积(ml)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1ml 碱性提取液),超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次),95℃水浴 5min(盖紧,以防止水分散失);冰浴中冷却后,10000g 4 ℃离心 10min;取 500μl 上清液,加入 500μl 酸性提取液使之中和,混匀,10000g 4 ℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
1、分光光度计或酶标仪预热 30min 以上,调节波长至 570nm,蒸馏水调零。
2、加样表(在 1.5ml 棕色EP 管中按下表依次加样):
试剂名称(μl) | 对照管 | 测定管 |
样本 | 20 | 20 |
试剂一 | 80 | 80 |
试剂二 | 30 | 30 |
试剂三 | 30 | 30 |
试剂四 | 30 | 30 | ||
试剂五 | 30 | 30 | ||
试剂六 | 200 | 混匀,室温避光静置 20min | ||
试剂六 | 200 |
充分混匀,静置 5min 后,20000g,25℃离心 5min,弃上清,沉淀中加入:
试剂七 | 400 | 400 |
混匀,取 200μl 转移至微量石英比色皿或 96 孔板中,570nm 下读取对照吸光值 A1 和测定管吸光值
A2,计算△A=A2-A1。
1、如果一次性测定样本数较多,可将试剂一、二、三和四按比例配成混合液。
2、对照管和测定管的测定步骤的区别:对照管加完试剂一、二、三、四和五后必须马上加试剂六;测定管加完试剂一、二、三、四和五后必须反应 20min 后再加试剂六。
3、反应过程中注意避光。
4、若NADP+测定中△A(A2-A1)≤0.0144,NADPH 测定中△A(A2-A1)≤0.0259,说明样本中辅酶含量较低,已低于检测限,可做如下调整:(1)将测定管避光静置时间 20min 延长到 60min;(2)在提取阶段增加取样量,即取 0.2g 样本或 0.2ml 样本加入 1ml 提取液。
5、由于每一个测定管需要设一个对照管,本试剂盒 100 管保证测 48 个NADP+或NADPH.
标准条件下的回归曲线为y = 0.0985x + 0.0144,R2 = 0.9998;其中y 为△A,x 为NADP+浓度nmol/ml 1、血清(浆)中 NADP+含量计算
NADP+含量(nmol/ml)=[ (△A -0.0144)÷0.0985×V1) ]÷(V3×V1÷V2)= 203×(△A -0.0144)
2、组织、细菌或细胞中NADP+含量计算 (1)按样本蛋白浓度计算
NADP+ (nmol/mg prot)=[(△A -0.0144)÷0.0985×V1) ]÷(V1×Cpr)= 10.2×(△A -0.0144)÷Cpr
(2) 按样本鲜重计算
NADP+ (nmol/g 鲜重)= [(△A -0.0144)÷0.0985×V1)] ÷(W×V1÷V2)=20.3×(△A -0.0144)÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
NADP+ (nmol/104 cell)=[(△A -0.0144)÷0.0985×V1)] ÷(500×V1÷V2)=0.04×(△A -0.0144)
标准条件下的回归曲线为y = 0.6198x + 0.0259,R2 = 0.9977;其中y 为△A,x 为NADPH 浓度nmol/ml 1、血清(浆)中 NADPH 含量计算
NADPH 含量(nmol/ml)= [(△A -0.0259)÷0.6198×V1)] ÷(V3×V1÷V2)= 32.3× (△A -0.0259)
2、组织、细菌或细胞中NADPH 含量计算
(1) 按样本蛋白浓度计算
NADPH (nmol/mg prot)=[ (△A -0.0259)÷0.6198×V1)] ÷(V1×Cpr)= 1.6× (△A -0.0259)÷Cpr
(2) 按样本鲜重计算
NADPH (nmol/g 鲜重)=[(△A -0.0259)÷0.6198×V1) ]÷(W×V1÷V2)=3.2× (△A -0.0259)÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
NADPH (nmol/104 cell)=[(△A -0.0259)÷0.6198×V1) ]÷(500×V1÷V2)=0.006× (△A -0.0259)
V1:加入反应体系中样本体积,0.02ml;V2:加入提取液体积,2ml;V3:加入血清(浆)体积:0.1ml; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml; W:样本质量,g;500:细胞或细菌总数,500 万。
注意:*低检测限为 0.01nmol/ml 或 0.01nmol/g 鲜重 或 0.001nmol/mg prot
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